نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه ولی‌عصر (عج) رفسنجان

2 استادیار فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه علامه‌طباطبایی

3 کارشناسی ارشد مرکز تحقیقات فیزیولوژی دانشگاه علوم پزشکی کرمان

چکیده

هدف از پژوهش حاضر، بررسی اثر پنج هفته تمرین تناوبی شدید بر سطوح عامل نکروز تومور آلفا در بافت چربی زیرپوستی و احشایی موش‌های صحرایی نر بود. بدین‌منظور، 20 سر موش صحرایی (با میانگین سنی هشت هفته و میانگین تودۀ بدنی 10±190 گرم) به‌صورت تصادفی به دو گروه تمرین تناوبی شدید و گروه کنترل تقسیم شدند. برنامۀ تمرین تناوبی شدید به‌صورت پنج جلسه در هفته و به‌مدت پنج هفته اجرا گردید. حیوانات در هفتۀ اول با سرعت 37 متر بر دقیقه، شش وهلۀ دو دقیقه‌ای را با یک دقیقه استراحت فعالیت نمودند. در هفتۀ دوم، سوم، چهارم و پنجم تعداد وهله‌ها به‌ترتیب به 7، 9،10 و 12 مرحله رسید و سرعت نیز به 40،43،49 و 52 متر بر دقیقه افزایش یافت. همچنین، 72 ساعت پس از آخرین جلسۀ تمرین و در حالت ناشتایی، حیوانات با استفاده از زایلازین و کتامین بیهوش شدند و بافت چربی احشایی و زیرپوستی آن‌ها استخراج گشت. همچنین، جهت سنجش عامل نکروز تومور آلفا، گلوکز و انسولین از روش الایزا استفاده شد و مقادیر گلوکز نیز به روش رنگ‌سنجی آنزیماتیک مورد اندازه‌گیری قرار گرفت. علاوه‌براین، به‌منظور تجزیه‌و‌تحلیل داده‌ها، آزمون تی مستقل مورداستفاده قرار گرفت و سطح معناداری (05/0) در نظر گرفته شد. نتایج نشان می‌دهد که پنج هفته تمرین تناوبی شدید باعث کاهش معنادار سطوح عامل نکروز تومور آلفا در بافت چربی احشایی و زیر پوستی و انسولین پلاسمایی (P≤0.001) و نیز مقاومت به انسولین (P≤0.01) شده است. بااین‌حال، تغییرات در گلوکز پلاسما معنادار نمی‌باشد (P=0.752). درمجموع، نتایج حاصل از این پژوهش بیانگر این است که تمرین تناوبی شدید می‌تواند باعث کاهش سطوح عامل نکروز تومور آلفا در بافت چربی احشایی و زیرپوستی و نیز انسولین پلاسمایی شود. همچنین، این روش تمرینی می‌تواند در کاهش مقاومت به انسولین نیز نقش داشته باشد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

1. Prenzler N K, Macke C, Horn R, Brabant G, Pabst R, Richter M, et al. Obesity influences the food consumption and cytokine pattern in ghrelin-treated endotoxemic rats. Life Sci. 2007; 81(1): 80-7.
2. Wang B, Wood I S, Trayhurn P. Dysregulation of the expression and secretion of inflammation-related adipokines by hypoxia in human adipocytes. Pflugers Arch­. 2007; 455(3): 479-92.
3. Huang C, Niu K, Momma H, Kobayashi Y, Guan L, Nagatomi R. Inverse association between circulating adiponectin levels and skeletal muscle strength in Japanese men and women. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 2014; 24(1): 42-9.
4. Olszanecka-Glinianowicz M, Chudek J, Kocełak P, Szromek A, Zahorska-Markiewicz B. Body fat changes and activity of tumor necrosis factor< i> α system—a 5-year follow-up study. Metabolism. 2011; 60(4): 531-6.
5. Yoshida H, Takamura N, Shuto T, Ogata K, Tokunaga J, Kawai K, et al. The citrus flavonoids hesperetin and naringenin block the lipolytic actions of TNF-α in mouse adipocytes. Biochem Biophys Res Commun. 2010; 394(3): 728-32.
6. Lujan H L, DiCarlo S E. Physical activity, by enhancing parasympathetic tone and activating the cholinergic anti-inflammatory pathway, is a therapeutic strategy to restrain chronic inflammation and prevent many chronic diseases. Med Hypotheses. 2013; 80(5): 548-52.
7. Reihmane D, Dela F. Interleukin-6: Possible biological roles during exercise. Eur J Sport Sci. 2014; 14(3): 242-50.
8. Donatto F, Neves R, Rosa F, Camargo R, Ribeiro H, Matos-Neto E, et al. Resistance exercise modulates lipid plasma profile and cytokine content in the adipose tissue of tumour-bearing rats. Cytokine. 2013; 61(2): 426-32.
9. Speaker K J, Cox S S, Paton M M, Serebrakian A, Maslanik T, Greenwood B N, et al. Six weeks of voluntary wheel running modulates inflammatory protein (MCP-1, IL-6, and IL-10) and DAMP (Hsp72) responses to acute stress in white adipose tissue of lean rats. Brain Behav Immun. 2014; 39(1) :87-98.
10. Sakurai T, Izawa T, Kizaki T, Ogasawara J E, Shirato K, Imaizumi K, et al. Exercise training decreases expression of inflammation-related adipokines through reduction of oxidative stress in rat white adipose tissue. BBRC J. 2009; 739­(2): 605-­9.
11. Vosoughi V, Moradi F, Aghaalinejad H, Peeri M. Effect of Strength Training on CRP, TNF-α, Muscular Strength, and Cardio -Respiratory Function in Inactive Adolescent Girls. JRUMS. 2015; 14 (2) :85-98
12. Kordi M, Anooshe L, Khodadade S, Maghsodi N, Sanglachi B, Hemmatinafar B. Comparing the Effect of Three Methods of Combined Training on Serum Levels of Ghrelin, Pro and Anti-inflammatory Cytokines in Multiple Sclerosis (MS) Patients. ZUMS Journal. 2014; 22 (91) :39-51
13. Williams P T, Krauss R M, Vranizan K M, Wood P. Changes in lipoprotein subfractions during diet-induced and exercise-induced weight loss in moderately overweight men. Circulation. 1990; 81(4): 1293-304.
14. Ross R, Dagnone D, Jones P J, Smith H, Paddags A, Hudson R, et al. Reduction in obesity and related comorbid conditions after diet-induced weight loss or exercise-induced weight loss in menA randomized, controlled trial. Ann Intern Med. 2000; 133(2): 92-103.
15. Ballor D L, Poehlman E T. Exercise-training enhances fat-free mass preservation during diet-induced weight loss: A meta-analytical finding. International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders: Int J Obes Relat Metab Disord. 1994; 18(1): 35-40.
16. Rashidlamir A, Gholamian S, Ebrahimi Atri A, Seyyedalhoseyni M, Hesar Kooshki M. Effect of Regular Aerobic Exercise on Plasma Levels of Resistin and Adiponectin in Active Young Females. J Mazandaran Univ Med Sci. 2013; 23 (101) :67-76
17. M. Bayati, R. Gharakhanlou, B. Farzad. Adaptations of physiological performance following high-intensity interval training. exercise physio. 2014; 26(7) 15-32.
 18. M. Siahkohian, D. Khodadadi. The effect of the HIIT and moderate continius training on aerobice and anaerobice parametes in athletic boys. exerc physio. 2012; 18(5) 39-52.
19. P. Roozbahani, B. Mirzaie. The effect of the HIIT in In normobaric hypoxic conditions on serom IL-6 levels and this ralationship with glucose non-athletic Young. exercise physio. 2015; 6(24) 15-30.
20. Ahmadizad S, Avansar AS, Ebrahim K, Avandi M, Ghasemikaram M. The effects of short-term high-intensity interval training vs. moderate-intensity continuous training on plasma levels of nesfatin-1 and inflammatory markers. Horm Mol Biol Clin Investig. 2015; 21(3): 165-73.
21. Afzalpour M E, Chadorneshin H T, Foadoddini M, Eivari H A. Comparing interval and continuous exercise training regimens on neurotrophic factors in rat brain. Physiol Behav. 2015; 147(Issue null ): 78-83.
22. Nikooie R, Sajadian S. Exercise-induced lactate accumulation regulates intramuscular triglyceride metabolism via transforming growth factor-b1 mediated pathways. Molecular and Cellular Endocrinology. 2016; 419(Issue null): ­244-­51.
23. Garekani E T, Mohebbi H, Kraemer R R, Fathi R. Exercise training intensity/volume affects plasma and tissue adiponectin concentrations in the male rat. Peptides. 2011; 32(5): 1008-12
24. Mosaferi-Ziaaedini M, Ebrahim K, Amani D, Arabnarmi Z. Effect of Supplementary Consumption of Coenzyme Q10 on TNF-α Serum Levels during Maximal Training . J Ardabil Univ Med Sci. 2012; 12 (3) :303-311
25. Mattusch F, Dufaux B, Heine O, Mertens I, Rost R. Reduction of the plasma concentration of C-reactive protein following nine months of endurance training. Int J Sports Med. 2000; 21(1): 21-4.
26. Festa A, D’Agostino R, Howard G, Mykkänen L, Tracy R P, Haffner S M. Chronic subclinical inflammation as part of the insulin resistance syndrome the Insulin Resistance Atherosclerosis Study (IRAS). Circulation. 2000; 102(1): 42-7.
27. Plaisance E P, Grandjean P W. Physical activity and high-sensitivity C-reactive protein. Sports Medicine. 2006; 36(5): 443-58.
28. Fallon K, Fallon S, Boston T. The acute phase response and exercise: Court and field sports. Br J Sports Med. 2001; 35(3): 170-3.
29. Fernández-Real J M, Ricart W. Insulin resistance and chronic cardiovascular inflammatory syndrome. Endocr Rev. 2003; 24(3): 278-301.
30. Welsh P, Polisecki E, Robertson M, Jahn S, Buckley B M, de Craen A J, et al. Unraveling the directional link between adiposity and inflammation: a bidirectional Mendelian randomization approach. J Clin Endocrinol Metab. 2010; 95(1): 93-9.
31. Fiers W. Tumor necrosis factor characterization at the molecular, cellular and in vivo level. FEBS Letters. 1991; 285(2): 199-212.
32. Keller C, Keller P, Giralt M, Hidalgo J, Pedersen B K. Exercise normalises overexpression of TNF-α in knockout mice. Biochem Biophys Res Commun. 2004; 321(1): 179-82.
33. van der Poll T, Coyle S M, Barbosa K, Braxton C C, Lowry S F. Epinephrine inhibits tumor necrosis factor-alpha and potentiates interleukin 10 production during human endotoxemia. J Clin Invest. 1996; 97(3): 713.
34. Vieira V J, Valentine R J, Wilund K R, Antao N, Baynard T, Woods J A. Effects of exercise and low-fat diet on adipose tissue inflammation and metabolic complications in obese mice. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2009; 296(5): E1164-E71.
35. Pervaiz N, Hoffman-Goetz L. Immune cell inflammatory cytokine responses differ between central and systemic compartments in response to acute exercise in mice. Exerc Immunol Rev. 2012; 18(Issue null: 142-57.
36. Martín-Cordero L, García J J, Hinchado M D, Bote E, Manso R, Ortega E. Habitual physical exercise improves macrophage IL-6 and TNF-α deregulated release in the obese zucker rat model of the metabolic syndrome. Neuroimmunomodulation. 2011; 18(2): 123-30.
37. Nessler J, Nessler B, Kitliński M, Gackowski A, Piwowarska W, Stepniewski M. Concentration of BNP, endothelin 1, pro-inflammatory cytokines (TNF-alpha, IL-6) and exercise capacity in patients with heart failure treated with carvedilol. Kardiol Pol. 2008; 66(2): 144-51; Discussion 52-3.
38. White L J, Castellano V, Mc Coy S C. Cytokine responses to resistance training in people with multiple sclerosis. J Sports Sci. 2006; 24(8): 911-4.
39. Åstrand P O. Textbook of work physiology: Physiological bases of exercise. Human Kinetics. 2003; 4: 521-590
40. Hotamisligil G. Mechanisms of TNF-alpha-induced insulin resistance. Exp Clin Endocrinol Diabetes: Official Journal, German Society of Endocrinology [and] German Diabetes Association. 1998; 107(2): 119-25.
41. Hotamisligil G. The role of TNFα and TNF receptors in obesity and insulin resistance. J Intern Med. 1999; 245(6): 621-5.
42. Yokoyama T, Sekiguchi K, Tanaka T, Tomaru K, Arai M, Suzuki T, et al. Angiotensin II and mechanical stretch induce production of tumor necrosis factor in cardiac fibroblasts. Am J Physiol. 1999; 276(6): 1968-76.